¿Qué es el eje intestino-cerebro?

El eje intestino-cerebro se refiere a la comunicación bidireccional entre el sistema nervioso del tracto gastrointestinal (GI), denominado sistema nervioso entérico (ENS), y el sistema nervioso central (SNC). El intestino humano adulto contiene más de 1 kg de bacterias, que no solo son responsables de la salud intestinal, sino que también influyen en el funcionamiento de otros órganos, incluido el cerebro.

La microbiota intestinal es capaz de comunicarse con el cerebro a través de una variedad de rutas, incluso a través de vías directas de la médula espinal y el nervio vago o a través de metabolitos circulantes y células inmunes. El microbioma intestinal juega un papel crítico en muchos procesos neurogenerativos, como la formación de la barrera hematoencefálica, la mielinización, la maduración de la microglía, la respuesta inmune a la infección y la neurogénesis. La microbiota intestinal alterada o desregulada, especialmente en la primera infancia o durante el envejecimiento, puede tener un efecto grave en la función cerebral, lo que lleva a afecciones neuropsiquiátricas y trastornos neurodegenerativos.

El póster educativo de Novus que ilumina la conexión intestino-cerebro del eje.

Solicitar o descargar póster del eje intestino-cerebro

 

Sistema nervioso entérico

El sistema nervioso entérico (ENS) es parte del sistema nervioso autónomo que puede funcionar de forma independiente, pero también tiene múltiples conexiones con el SNC, conocido como el eje intestino-cerebro. El sistema nervioso entérico, como se muestra a continuación, es una serie compleja de neuronas sensoriales, interneuronas y neuronas motoras que forman circuitos locales dentro de la pared entérica, con entradas tanto del entorno local como del SNC.

Actores clave e interacciones neuronales del sistema nervioso entérico

Schematic showing the key players of the ENS with the neuronal connections innervating the intestinal layers, the metabolites that are circulated to the CNS, and the proteins expressed by the vagus nerve and spinal cord.

Gráfico creado en colaboración con el Dr. Timothy Sampson, Ph.D. del Departamento de Fisiología de la Escuela de Medicina de la Universidad de Emory

La motilidad GI está regulada por las interacciones entre las neuronas entéricas, los músculos y las células epiteliales intestinales. Entre estas, las neuronas sensoriales Las neuronas aferentes primarias intrínsecas (IPAN) desempeñan un papel central en la mecanodetección y responden a los estímulos químicos para regular la motilidad. Por ejemplo, las moléculas derivadas de microbios y producidas por el huésped, incluidos los lipopolisacáridos (LPS) y los ácidos biliares, se secretan en la circulación, son detectadas por las neuronas sensoriales y procesadas por el cerebro.

El nervio vago y la médula espinal también expresan proteínas y enzimas importantes, incluida la colina acetiltransferasa (ChAT), que regula la biosíntesis del neurotransmisor acetilcolina, y la tubulina Beta III (TUBB3), que desempeña un papel en el desarrollo neuronal. El nervio vago contiene fibras aferentes (sensoriales) y eferentes (motoras) y, por lo tanto, es responsable de llevar señales motoras al intestino y transmitir señales sensoriales al SNC.

Otro jugador clave del sistema nervioso entérico son los EPC, a menudo conocidos como las células gustativas del intestino, que son células epiteliales intestinales especializadas capaces de detectar y responder a las señales ambientales. Las EPC desempeñan un papel en la comunicación intestino-cerebro a través de conexiones neuronales directas e indirectas, sirviendo como un componente vital del sistema nervioso entérico.

Los cultivos celulares tridimensionales (3D), también llamados organoides, se están convirtiendo en la tecnología preferida para estudiar la naturaleza compleja y dinámica del sistema nervioso entérico en comparación con los modelos tradicionales que involucran modelos animales, análisis de tejidos post mortem y estudios genéticos humanos. Los sistemas de modelos de cultivo celular 3D recapitulan con mayor precisión las interacciones célula-célula en comparación con los modelos de cultivo celular 2D, al tiempo que proporcionan acceso a tejidos previamente inaccesibles. Los organoides entéricos consisten en organoides intestinales humanos con la adición de entradas de neuronas entéricas y sensoriales.

R&D Systems ofrece un amplio catálogo de recursos de cultivo de organoides que incluyen protocolos, recetas y reactivos.

 

Señalización de células enteroendocrinas (CEE)

Los EPC desempeñan un papel en la regulación de la secreción y la motilidad intestinal, la ingesta de alimentos, los niveles de glucosa después de las comidas y el metabolismo. Los EPC pueden detectar el contenido luminal y, a su vez, producir y secretar moléculas de señalización como hormonas, péptidos y neurotransmisores que pueden actuar en los circuitos locales y unirse a receptores específicos. Las EPC pueden transmitir señales localmente a otras células intestinales cercanas a través de la señalización paracrina, a través de hormonas circulantes en el torrente sanguíneo a través de la señalización endocrina y a través de vías neuronales.

El circuito neuroepitelial entérico está formado por procesos similares a axones que hacen conexiones directas desde las EPC al cerebro y al intestino. Las EPC están inervadas por aferentes sensoriales de varios lugares, formando la comunicación bidireccional cerebro-intestino. Específicamente, hay procesos neuronales del tronco encefálico (nervio vago, núcleo tractus solitarius (NTS)), los ganglios de la raíz dorsal (DRG) de la médula espinal y el sistema nervioso entérico (ENS).

Las EPC facilitan la señalización de intestino a cerebro

Schematic highlighting the various receptors of enteroendocrine cells and the central nervous system that facilitate gut-to-brain signaling.

Gráfico creado en colaboración con el Dr. Timothy Sampson, Ph.D. del Departamento de Fisiología de la Escuela de Medicina de la Universidad de Emory

 

Tinción inmunohistoquímica del tejido del adenocarcinoma de colon con anticuerpo monoclonal anti-TLR4 de ratón. La tinción inmunohistoquímica del tejido del páncreas de rata con anticuerpo policlonal anti-CCK-A R de conejo (rojo) y tejido fue contramanteñido (verde). Tinción inmunohistoquímica del páncreas de ratón con anti-somatostatina policlonal de conejo Receptor 2/SSRT2 y contramanteada con DAB y hematoxilina.
Los miofibroblastos pericriptales son responsables del aumento de la expresión de TLR4 en un subconjunto de CRC. Tinción IHC del adenocarcinoma de colon utilizando anticuerpos anti-TLR4 (76B357.1) [NB100-56566] (40x). La tinción se co-localiza en el espacio pericripcial, confirmando que la señal surge de los miofibroblastos pericriptales. Imagen recopilada y recortada por CiteAb de la siguiente publicación (//www.jeccr.com/content/33/1/45), licenciada bajo una licencia CC-BY. CCK-A R se detectó en perfusión secciones congeladas fijas de páncreas de rata utilizando 5 μg/mL Humano/Ratón/Rata CCK-A R Anticuerpo policlonal purificado por afinidad de antígeno (AF2680) durante la noche a 4 °C. El tejido fue teñido (rojo) y contrateñido (verde). Tinción de IHC con anticuerpo del receptor de somatostatina 2/SSTR2 [NB300-157] en páncreas de ratón utilizando DAB con contratinción de hematoxilina.

 

Los diversos receptores ubicados en los propios EPC y dentro de los NTS y DRG son esenciales para la comunicación intestino-SNC y son responsables de detectar los metabolitos y moléculas secretadas y transmitir las respuestas apropiadas. Los EPC poseen procesos citoplasmáticos basales que contienen hormonas llamados neurópodos que pueden extenderse a células distantes y conectarse directamente a los nervios. Estos neurópodos ayudan a formar conexiones sinápticas entre las proteínas presinápticas y postsinápticas de las EPC y las neuronas sensoriales.

Milo de ProteinSimple se ha utilizado para confirmar neuropods de EPC que contienen moléculas de señalización, midiendo específicamente la expresión de la proteína presináptica sinapsina-I. Obtenga más información sobre los marcadores de neurópodos detectados por Milo.

Existen distintas subpoblaciones de EPC que liberan moléculas de señalización y hormonas específicas en respuesta a diversos estímulos. Los estudios con ratones transgénicos han revelado que las EPC son capaces de secretar más de una molécula de señalización y tienen perfiles de coexpresión complejos.

Las moléculas de señalización producidas por las EPC también están influenciadas por la región del tracto gastrointestinal. Por ejemplo, las células A, un subtipo de EPC ubicado principalmente en el estómago, liberan la molécula de señalización grelina, mientras que las células L ubicadas en gran parte en el intestino delgado distal (SI) y el colon producen 5-HT, GLP-1 y péptido YY (PYY). Estas moléculas de señalización tienen diversas funciones que van desde la motilidad gastrointestinal hasta la saciedad de señalización. La identificación de las moléculas de señalización específicas expresadas por cada subtipo celular dará como resultado una mejor caracterización de las EPC y proporcionará una comprensión más profunda de las interacciones célula-molécula-receptor.

 

Moléculas de señalización EEC, subtipo celular, especificidad y ubicación del receptor, y función

Molécula de señalización CEE Función de molécula de señalización Subtipo CEE (Ubicación) Receptor específico Localización del receptor
5-HT Multifuncional, promueve la motilidad GI. Activa los receptores 5-HT (5-HT3 y 5-HT4) en las aferencias vagales. Células EC (SI proximal estomacal, SI distal, LI proximal, LI distal)células L (SI distal, LI proximal, LI distal)células I (SI proximal)células K (SI proximal) 5-HT Rs SNC, Neuronas entéricas, Células inmunes, Células musculares, Nervio vago
Colecistoquinina (CCK) Aumenta la saciedad, retrasa el vaciado gástrico. Responde a los SCFA. Células I (SI proximal) CCK-ARCCKBR SNC, neuronas entéricas, vesícula biliar, tracto gastrointestinal, páncreas, nervio vago
Gastrina Estimula la secreción de ácido estomacal y enzimas, promueve el vaciamiento gástrico. Células G (estómago, SI proximal) CCKBR SNC, tracto gastrointestinal
Grelina Promueve el apetito, aumenta la motilidad. Células G (estómago, SI proximal) Receptor de grelina / GHSR SNC, nervio vago
GLP-1 Inhibe la motilidad, el vaciado y promueve la saciedad. Células L (SI distal, LI proximal, LI distal) GLP-1R SNC, neuronas entéricas, células inmunes, riñón, páncreas
Glutamato Señalización sináptica a aferentes sensoriales. En todo el tracto intestinal iGluR
mGluR
Cns
Leptina Señales de saciedad. Sinérgico con CCK. Célula principal gástrica (estómago) célula P (estómago) Leptina R SNC, tracto gastrointestinal, nervio vago
Péptido YY (PYY) Inhibe la ingesta de alimentos, desencadena la rotura ileal. Actúa directamente sobre las aferencias vagales y cruza la barrera hematoencefálica (BBB) para actuar a través de los receptores NPY (receptores Y1-5), principalmente a través de NPY2R. Células L (SI distal, LI proximal, LI distal) Receptor peptídico YY (PYY) SNC, neuronas entéricas
Somatostatina Inhibe la secreción estomacal, disminuye el vaciado gástrico, ralentiza la motilidad. Células D (estómago, SI proximal) Receptores de somatostatina (SSTR1, SSTR2, SSTR3, SSTR4, SSTR5) SNC, tracto gastrointestinal, células inmunes, páncreas

*Nota: Esta no es una tabla inclusiva, sino que destaca algunas de las principales moléculas de señalización. *Abreviaturas: LI, Intestino Grueso; SI, intestino delgado

 

Análisis inmunohistoquímico del tejido estomacal humano fijado por inmersión, incrustado en parafina, sondeado con anticuerpos policlonales anti-grelina/obestatina de oveja, teñido con el kit HRP-DAB y contramantado con hematoxilina. Expresión inmunohistoquímica de perfusión fija, tejido cerebral de ratón congelado sondeado con anticuerpo policlonal anti-leptina/OB de ratón, teñido con kit HRP-DAB y contrateñido con hematoxilina. Tinción inmunohistoquímica de perfusión, secciones fijas de tejido de médula de rata congelada con anticuerpo monoclonal anti-HT-6 de conejo, teñido con anticuerpo secundario anti-conejo en rojo y contramanteñido con DAPI en azul.
La grelina/obestatina se detectó en secciones fijas de inmersión incrustadas en parafina del estómago humano utilizando el anticuerpo policlonal purificado por afinidad de antígeno antihumano /obestatina de oveja (AF8149) a 1 μg/ml durante la noche a 4 °C. El tejido se tiñó con el kit de tinción de células y tejidos Anti-Sheep HRP-DAB (CTS019) (marrón) y se contrateñió con hematoxilina (azul). La tinción específica se localizó en el citoplasma de la mucosa gástrica. Se detectó leptina/OB en perfusión fijando secciones congeladas del cerebro de ratón utilizando el anticuerpo policlonal purificado por afinidad de leptina de ratón/OB (AF498) a 5 μg/ml durante la noche a 4 °C. El tejido se tiñó utilizando el kit de tinción de células y tejidos Anti-Goat HRP-DAB (CTS008) (marrón) y se contrateñió con hematoxilina (azul). La tinción específica se localizó en el citoplasma neuronal Se detectó 5-HT6 en perfusión fijando secciones congeladas del cerebro de rata (médula) utilizando el anticuerpo monoclonal 5-HT6 antihumano de conejo (MAB9496) a 1,7 μg / ml durante la noche a 4 ° C. El tejido se tiñó (rojo) utilizando el anticuerpo secundario IgG anti-conejo conjugado con 557 NorthernLights™ (NL004) y se contrateñó con DAPI (azul). La tinción específica se localizó en el citoplasma de los cuerpos celulares neuronales.

volver al principio

Señalización del microbioma

La estructura del cerebro y el microbioma

La microbiota intestinal es crítica para la formación y funcionalidad de la barrera hematoencefálica (BBB). El BBB sirve como una barrera semipermeable selectiva entre los solutos en la sangre circulante y el cerebro. El BBB está compuesto por células endoteliales, pericitos, astrocitos, neuronas, oligodendrocitos y componentes de la matriz extracelular que en conjunto funcionan en el mantenimiento de la homeostasis del SNC.

Los estudios de ratones libres de gérmenes (GF) revelan una función BBB deteriorada y una mayor permeabilidad a las macromoléculas en comparación con los ratones colonizados normales. Por lo general, los microbios intestinales producen ácidos grasos de cadena corta (SCFA) que señalan a las células epiteliales para formar el BBB, aumentan la expresión de proteínas de unión estrecha, incluidas la claudina-5, la ocludina y la ocludensa de la zónula citoplasmática-1 (zo-1) / proteína de unión apretada 1, y disminuyen la expresión de genes que codifican para proteínas relacionadas con la mielinización.

BBB y expresión de proteína de mielinización en ratones GF en comparación con ratones colonizados

Proteína Expresión en ratones GF en comparación con ratones colonizados Función
Claudio-5 Decrecido Proteína principal de unión estrecha en BBB. Knock-out aumenta la permeabilidad de BBB.
Ocludina Decrecido Proteína crítica en la integridad de BBB. Se conecta directamente a ZO-1 y al citoesqueleto de actina.
SU-1/TJP1 Decrecido Formar un puente citoplasmático que conecte las uniones estrechas con el citoesqueleto celular.
Egr1 Aumentado La respuesta temprana al crecimiento 1 (Egr1) está involucrada en la poda sináptica y la neurogénesis adulta.
Mag1(AGPAT9) Aumentado La glicoproteína 1 asociada a mielina (Mag1(AGPAT9)) es fundamental para la formación y el mantenimiento de las vainas de mielina. Participa en la mielinización durante la regeneración nerviosa.
Mbp Aumentado La proteína básica de mielina (Mbp) se expresa en oligodendrocitos después de la diferenciación y es responsable de generar pilas de mielina compactadas.
Mobp Aumentado La proteína básica de oligodendrocitos de mielina (Mobp) tiene un papel en la compactación y estabilización de la vaina de mielina.
Mog Aumentado La glicoproteína de oligodendrocitos de mielina (Mog) es una mielina menor localizada en la superficie externa de la vaina de mielina. MOG es un antígeno autoinmune importante en modelos de enfermedades desmielinizantes.
Olig1 Aumentado Factor de transcripción que favorece la formación y maduración de oligodendrocitos.
Plp1 Aumentado La proteína proteolípida 1 (Plp1) se expresa en oligodendrocitos y células de Schwann. Plp1 tiene un papel en la estabilización y compactación de la mielina.
Sox10 Aumentado Regula la expresión de mielina en oligodendrocitos.

Ver más recursos sobre la barrera hematoencefálica

 

Expresión inmunohistoquímica de secciones cerebrales de ratón sondeadas con anticuerpos monoclonales anti-MBP de ratón, teñidos con anticuerpos secundarios anti-ratón en rojo y núcleos contrateñidos en azul. Expresión inmunohistoquímica del anticuerpo policlonal anti-TNF-alfa de conejo en el intestino de ratón incrustado en parafina fija en formalina, teñido con el kit HRP-DAB y contramantado con hematoxilina.
Las criosecciones cerebrales de ratón se tiñeron con anti-MBP (2H9) [NBP2-22121] (1:400) y anti-ratón Alexa Fluor 555 IgG (rojo). Ampliación 1:20. Imagen de la revisión verificada del cliente. Olig1 se detectó en secciones fijas de glioma humano incrustadas en parafina fija por inmersión utilizando 8 μg/ml de anticuerpo monoclonal Olig1 humano (MAB2417) durante la noche a 4 °C. El tejido se tiñó con el kit de tinción de células y tejidos Anti-Mouse HRP-DAB (CTS002) (marrón) y se contrateñió con hematoxilina (azul).

Microglia y respuesta a la infección

La microglía son las células inmunes residentes del cerebro. Se ha demostrado que los SCFA producidos por el microbioma intestinal promueven la maduración de la microglía. Los ratones GF tienden a tener microglía más inmadura que aparecen en un estado pausado o de topografía.

La densidad microglial aumenta en ratones GF y tienen morfología ramificada, clasificada por cuerpos celulares más pequeños y numerosos procesos largos. Curiosamente, la microglía de ratones libres de patógenos específicos (SPF) se encuentra en un estado activo y tiene grandes cuerpos de células ameboides y procesos retraídos y más rechonchos, característicos de la madurez.

Además de las diferencias morfológicas, la microglía inmadura y madura tiene una expresión génica variable. Específicamente, la microglía inmadura ha aumentado la expresión génica del adn Damage Inducible Transcript 4 (DDIT4) y Colony stimulating factor receptor 1 (CsfR1), los cuales tienen un papel en la regulación del crecimiento, la maduración, la proliferación y la supervivencia de las células de microglia. Por el contrario, la microglía inmadura ha disminuido Cst7, un gen asociado con el envejecimiento y la desmielinización, y la expresión de Neurl3 en comparación con la microglía madura y colonizada.

Además de la morfología microglial alterada y la expresión génica, los ratones GF y colonizados tienen diferentes respuestas a la infección. El lipopolisacárido (LPS) es un patrón molecular asociado a patógenos (PAMP) que impulsa tanto la inflamación gastrointestinal como la neuroinflamación. El desafío bacteriano (como el LPS) o la infección viral hace que la microglía en el cerebro pase de un estado de encuesta a un estado activo y libere citoquinas proinflamatorias.

Western blot de lisados de la línea celular monocito/macrófago de ratón tanto no tratados como tratados con LPS, sondeados con anticuerpo anti-IL-6 policlonal de cabra, seguido de anticuerpo secundario conjugado con HRP anti-cabra que muestra banda en el carril tratado. Western blot muestra lisados de línea celular de monocitos/macrófagos de ratón RAW 264.7 sin tratar (-) o tratar (+) con LPS. La membrana de PVDF se sondeó con 0,5 μg/ml de anticuerpo policlonal purificado por afinidad de antígeno anti-ratón il 6 de cabra (AF-406-NA) seguido de anticuerpo secundario igG anti-cabra conjugado con HRP (HAF017). Se detectó una banda específica para il 6 a aproximadamente 22 kDa (como se indica).

La microglía inmadura (GF) muestra una respuesta de infección ineficiente en comparación con la microglía madura (colonizada) con disminución de la producción de IL-1β, IL-6, TNF y Nox2. Zheng et al examinaron los efectos de un fármaco con efectos neuroprotectores conocidos en muchas enfermedades neurodegenerativas y neuroinflamatorias sobre el dolor neuropático espinal. Los investigadores encontraron que la neuroinflamación espinal podría reducirse suprimiendo la producción de citoquinas IL-1β (NB600-633), detectada en Western Blot, lo que indica que la reducción del dolor inducida por fármacos fue causada por la inhibición de la vía microglial il-1β. En general, el estudio destaca que la microglía es uno de los actores clave que subyacen al dolor neuropático y, por lo tanto, puede ser un objetivo para el tratamiento del dolor relacionado con el SNC.

Forma

Descripción generada automáticamente
Respuesta de infección alterada en GF vs microglia colonizada

Respuesta ineficiente (GF) vs Respuesta robusta (colonizada)

Ccl2 Cxcl10 IL-6
Ccl7 ciclinaB2 IL-12b
c-Fos ciclina2 Marco
c-Jun FosB Nox2
Csf1 IL-1b TNF
Imagen que contiene Diagrama

Descripción generada automáticamente

Microglia en neuroinflamación Visión general

El ensayo de neutralización que muestra quimioatrayente de la proteína CCL/MCP-1 humana recombinante destruye la línea celular BaF3 transfectada por CCR2A de manera dependiente de la dosis y la proteína CCL/MCP-1 se neutraliza aumentando las concentraciones de anticuerpos CCL/MCP-1. Expresión inmunohistoquímica del anticuerpo policlonal anti-TNF-alfa de conejo en el intestino de ratón incrustado en parafina fija en formalina, teñido con el kit HRP-DAB y contramantado con hematoxilina.
La quimioatracción humana recombinante CCL2/MCP 1 (279-MC) atrae a la línea celular B pro de ratón BaF3 transfectada con CCR2A humana de manera dependiente de la dosis (línea naranja). La cantidad de células que migraron a través de la cámara de quimiotaxis inferior se midió con resazurina (AR002). La quimiotaxis provocada por CCL2/MCP 1 humano recombinante (75 ng/mL) se neutraliza (línea verde) al aumentar las concentraciones de anticuerpo monoclonal humano CCL2/MCP 1 (MAB679). El ND50 es típicamente 0.5-2.0 μg/mL. Análisis de una sección de tejido FFPE del intestino de ratón utilizando anticuerpos TNF-alfa (NBP1-19532) a una dilución de 1:300. La unión de este anticuerpo primario a la proteína TNF-alfa en la sección se detectó utilizando anticuerpo secundario marcado con HRP y reactivo DAB, y los núcleos de las células se contrateñieron con hematoxilina. Este anticuerpo TNF-alfa generó una inmunotinción difusa esperada de esta proteína en el tejido probado. La tinción se observó principalmente en las células epiteliales y algunas células también mostraron positividad de membrana.

 

Los kits ELISA de R&D Systems son los kits más confiables y publicados del mercado y adecuados para medir una amplia gama de moléculas.

volver al principio

 

Enfermedades neurodegenerativas

Las enfermedades y trastornos neurológicos no se originan únicamente en el cerebro, sino que están influenciados por una variedad de afecciones y factores periféricos. La neuroinflamación, el metabolismo alterado y el estrés oxidativo son características comunes de la neurodegeneración y el avance de la enfermedad. La microglía responde a los PAMPS y a los patrones moleculares asociados al daño (DAMP) asociados con la infección o los estados de enfermedad mediante la producción de especies reactivas de oxígeno (ROS), que contribuyen aún más a patologías neurodegenerativas como la enfermedad de Alzheimer (EA), la enfermedad de Parkinson (EP) y la esclerosis lateral amiotrófica (ELA).

En un estudio realizado por Lee et al, las células sanguíneas y el plasma del cordón umbilical humano se probaron como tratamiento para la EP. Los investigadores mostraron una reducción tanto en el marcador de activación de células inmunes MHC Clase II RT1B Anticuerpo (NB100-65541) como en la producción de citoquinas proinflamatorias junto con una disminución de la microbiota inflamatoria en el intestino, destacando el papel de la disbiosis intestinal en la neurodegeneración.

Novus Biologicals ofrece una variedad de diapositivas prefijadas y listas para usar de tejido cerebral normal y enfermo, incluyendo EA, EP, Esclerosis Múltiple, Depresión, Demencia y Parálisis Supranuclear Progresiva.

La hematoxilina y el tejido cerebral teñido de eosina se deslizan con la patología del Parkinson.
Tinción de hematoxilina y eosina: diapositivas de tejido cerebral (Parkinson) [NBP2-77716] – Tejido: cerebro humano, patología: enfermedad de Parkinson

Obtenga más información sobre neurodegeneración y objetivos de proteínas clave

volver al principio

Recursos y soporte del eje intestino-cerebro

Póster del eje intestino-cerebro

Neurociencia CellIdentity Markers

T Citoquinas y receptores

Neurodegeneración

Blogs del eje intestino-cerebro

Recursos organoides:

Manual de cultivo de organoides

Protocolos de cultivo de organoides

Recursos y recetas para cultivos de células organoides y 3D

Seleccionar referencias

Abdel-Haq, R., Schlachetzki, J., Glass, C. K. y Mazmanian, S. K. (2019). Conexiones microbioma-microglía a través del eje intestino-cerebroRevista de medicina experimental. https://doi.org/10.1084/jem.20180794

Bisht, K., Sharma, K., & Tremblay, M. È. (2018). El estrés crónico como factor de riesgo para la enfermedad de Alzheimer: Roles de la remodelación sináptica mediada por microglia, la inflamación y el estrés oxidativoNeurobiología del estrés. https://doi.org/10.1016/j.ynstr.2018.05.003

Buford T. W. (2017). (Des)Confíe en su intestino: el microbioma intestinal en la inflamación, la salud y la enfermedad relacionadas con la edadMicrobioma. https://doi.org/10.1186/s40168-017-0296-0

Chukwurah, E., Osmundsen, A., Davis, S. W., & Lizarraga, S. B. (2019). All Together Now: Modelando la interacción de sistemas neuronales con sistemas no neuronales utilizando modelos organoidesFronteras en neurociencia. https://doi.org/10.3389/fnins.2019.00582

Cryan, J. F., O’Riordan, K. J., Cowan, C., Sandhu, K. V., Bastiaanssen, T., Boehme, M., Codagnone, M. G., Cussotto, S., Fulling, C., Golubeva, A. V., Guzzetta, K. E., Jaggar, M., Long-Smith, C. M., Lyte, J. M., Martin, J. A., Molinero-Perez, A., Moloney, G., The Microbiota-Gut-Brain Axis. Revisiones fisiológicas. https://doi.org/10.1152/physrev.00018.2018

Morelli, E., Morillas, E., O’Connor, R., … Dinan, T. G. (2019). El eje microbiota-intestino-cerebro. Revisiones fisiológicas. https://doi.org/10.1152/physrev.00018.2018

Dinan, T. G., & Cryan, J. F. (2017). El eje microbioma-intestino-cerebro en la salud y la enfermedadClínicas de gastroenterología de América del Norte. https://doi.org/10.1016/j.gtc.2016.09.007

Fukui, H., Xu, X., & Miwa, H. (2018). Papel del eje microbiota intestinal-hormona intestinal en la fisiopatología de los trastornos gastrointestinales funcionalesRevista de neurogastroenterología y motilidad. https://doi.org/10.5056/jnm18071

Kadry, H., Noorani, B., & Cucullo, L. (2020). Una visión general de la barrera hematoencefálica sobre la estructura, la función, el deterioro y los biomarcadores de integridad. Fluidos y barreras del SNC. https://doi.org/10.1186/s12987-020-00230-3

Kaelberer, M. M., Rupprecht, L. E., Liu, W. W., Weng, P. y Bohórquez, D. V. (2020). Células de neurópodos: La biología emergente de la transducción sensorial intestino-cerebroRevisión anual de la neurociencia. https://doi.org/10.1146/annurev-neuro-091619-022657

Kaelberer, M. M., Buchanan, K. L., Klein, M. E., Barth, B. B., Montoya, M. M., Shen, X., & Bohórquez, D. V. (2018). Un circuito neuronal intestino-cerebro para la transducción sensorial de nutrientesCiencia. https://doi.org/10.1126/science.aat5236

Latorre, R., Sternini, C., De Giorgio, R., & Greenwood-Van Meerveld, B. (2016). Células enteroendocrinas: una revisión de su papel en la comunicación cerebro-intestinoNeurogastroenterología y motilidad : revista oficial de la Sociedad Europea de Motilidad Gastrointestinal. https://doi.org/10.1111/nmo.12754

Lee, D. H., & Linker, R. A. (2012). El papel de la glicoproteína oligodendrocitos de mielina en la desmielinización autoinmune: ¿un objetivo para la terapia de la esclerosis múltiple?Opinión de expertos sobre dianas terapéuticas. https://doi.org/10.1517/14728222.2012.677438

Lee, J. Y., Tuazon, J. P., Corey, S., Bonsack, B., Acosta, S., Ehrhart, J., Sanberg, P. R., & Borlongan, C. V. (2019). A Gutsy Move for Cell-Based Regenerative Medicine in Parkinson’s Disease: Targeting the Gut Microbiome to Sequester Inflammation and NeurotoxicityRevisiones e informes sobre células madre. https://doi.org/10.1007/s12015-019-09906-2

Liddle R. A. (2019). NeurópodosGastroenterología celular y molecular y hepatología. https://doi.org/10.1016/j.jcmgh.2019.01.006

Mosher, K. I., & Wyss-Coray, T. (2015). Vaya con su intestino: la microbiota se encuentra con la microglíaNeurociencia de la naturaleza. https://doi.org/10.1038/nn.4051

Rao, M., & Gershon, M. D. (2016). El intestino y más allá: el sistema nervioso entérico en los trastornos neurológicosReseñas de naturaleza. Gastroenterología y hepatología. https://doi.org/10.1038/nrgastro.2016.107

Sampson, T. R., & Mazmanian, S. K. (2015). Control del desarrollo, la función y el comportamiento del cerebro por el microbioma. Huésped celular y microbio. https://doi.org/10.1016/j.chom.2015.04.011

Sharon, G., Sampson, T. R., Geschwind, D. H. y Mazmanian, S. K. (2016). El sistema nervioso central y el microbioma intestinalCelda. https://doi.org/10.1016/j.cell.2016.10.027

Simpson, D., & Oliver, P. L. (2020). Generación de ROS en microglía: comprensión del estrés oxidativo y la inflamación en enfermedades neurodegenerativas. Antioxidantes (Basilea, Suiza).. https://doi.org/10.3390/antiox9080743

Stadelmann, C., Timmler, S., Barrantes-Freer, A., & Simons, M. (2019). Mielina en el sistema nervioso central: estructura, función y patologíaRevisiones fisiológicas. https://doi.org/10.1152/physrev.00031.2018

Veremeyko, T., Yung, A., Dukhinova, M., Strekalova, T., & Ponomarev, E. D. (2019). El papel de los factores neuronales en la reprogramación epigenética de la microglía en el sistema nervioso central normal y enfermoFronteras en neurociencia celular. https://doi.org/10.3389/fncel.2019.00453

Xu, L., He, D., & Bai, Y. (2016). Inflamación mediada por microglía y enfermedad neurodegenerativaNeurobiología molecular. https://doi.org/10.1007/s12035-015-9593-4

Zheng, S. H., Yan, C. Y., Duan, N., Wang, W., & Mei, X. P. (2019). El clorhidrato de penehyclidina suprimió el dolor neuropático inducido por la lesión del nervio periférico al inhibir la activación de la vía microglial MAPK / p-p38 / IL-1βDolor molecular, 15, 1744806919858260. https://doi.org/10.1177/1744806919858260